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RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)
更新時(shí)間:2025-07-02
訪問(wèn)次數(shù):1348
RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x由德國(guó)PyroScience公司聯(lián)合歐洲多國(guó)科學(xué)家研制生產(chǎn),基于REDFLASH(RF)光學(xué)傳感器技術(shù),操作簡(jiǎn)單,無(wú)需維護(hù)。氧氣測(cè)量?jī)x由主機(jī)、傳感器及軟件組成,應(yīng)用于環(huán)境科學(xué)、生態(tài)科學(xué)、植物科學(xué)、動(dòng)物科學(xué)、海洋科學(xué)、生物醫(yī)學(xué)、生物技術(shù)、食品科學(xué)等各個(gè)領(lǐng)域。在植物領(lǐng)域,RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x廣泛用于測(cè)量高等植物器官(葉、根、莖、種子)的呼吸代謝及藻類的光合放氧。
品牌PyroScience產(chǎn)地類別進(jìn)口
應(yīng)用領(lǐng)域環(huán)保,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)林牧漁,綜合

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量德國(guó)PyroScience公司聯(lián)合歐洲多國(guó)科學(xué)家研制生產(chǎn)基于REDFLASHRF光學(xué)傳感器技術(shù),操作簡(jiǎn)單,無(wú)需維護(hù)。氧氣測(cè)量主機(jī)、傳感器及軟件組成,應(yīng)用于環(huán)境科學(xué)、生態(tài)科學(xué)、植物科學(xué)、動(dòng)物科學(xué)、海洋科學(xué)、生物醫(yī)學(xué)、生物技術(shù)、食品科學(xué)等各個(gè)領(lǐng)域。在植物領(lǐng)域,RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量儀廣泛用于測(cè)量高等植物器官(葉、根、莖、種子)的呼吸代謝及藻類的光合放氧。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)


功能特點(diǎn)

REDFLASH技術(shù)無(wú)氧耗、高速響應(yīng)、低電耗、高精度、低交叉敏感性、低干擾

氧氣傳感器類型靈活多樣,包括探頭、探針、插入式、裸光纖、耐溶劑等接觸式傳感器以及薄膜貼、流通管、呼吸瓶等非接觸傳感器

氧氣測(cè)量范圍全量程和痕量可選

測(cè)量?jī)x小巧緊湊、電腦USB供電,無(wú)需額外電源

氧氣測(cè)量124通道可選

具備實(shí)時(shí)溫度補(bǔ)償

高時(shí)空解析度

氣體、液體樣品均可使用

具模擬輸出和廣播模式

配套分析軟件具備耗氧率計(jì)算和漂移補(bǔ)償?shù)墓δ?/span>

即插即用

輕松校準(zhǔn)

 

應(yīng)用方向

根系、下胚軸、花芽、種子等植物組織器官耗氧率的測(cè)量

特殊植物組織(如冠癭)的呼吸代謝測(cè)量

藻類光合放氧和凈光合速率的測(cè)定

 

技術(shù)指標(biāo)

1) 新一代FireSting-O2FS-O2)測(cè)量?jī)x:

a) 1通道、2通道4通道可供選配,分別可接1個(gè)、2個(gè)4個(gè)氧氣或溫度傳感器;另具備一個(gè)Pt100熱電阻溫度傳感器通道

b) 最大采樣頻率:每秒10-20

c) 內(nèi)置氣壓傳感器,3001100mbar0.06mbar分辨率,精確度±3mbar

d) 內(nèi)置濕度傳感器,0100%RH,分辨率0.04%,精確度±0.2%

e) 具模擬輸出和自動(dòng)模式,02.5VDC

f) USB2.0接口,通過(guò)USBPC供電,20mA@5VDC

g) 端口:串行接口UART

h) 大小:78x120x24mm,重290g

i) 操作環(huán)境:0-50℃,非冷凝

j) 軟件:Pyro WorkbenchWindows7/8/10,配置700MB硬盤(pán)、1GB內(nèi)存、1360×768屏幕分辨率 

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

2) 全量程氧氣測(cè)量參數(shù)

最佳測(cè)量范圍 0-50%O2(氣相),0-22mg/L(溶解氧)

最大測(cè)量范圍0-100%O2(氣相),0-44mg/L(溶解氧)

檢測(cè)極限:0.02%O2(氣相),0.01mg/L(溶解氧)

適用溫度范圍:0-50℃

3) 痕量氧氣傳感器測(cè)量參數(shù)

最佳測(cè)量范圍 0-10%O2(氣相),0-4.5mg/L(溶解氧)

最大測(cè)量范圍 0-21%O2(氣相),0-9mg/L(溶解氧)

檢測(cè)極限:0.005%O2(氣相),0.002mg/L(溶解氧)

適用溫度范圍:0-50℃

4) 氧氣校準(zhǔn)膠囊:用于氧氣傳感器的零點(diǎn)校準(zhǔn)。每個(gè)膠囊可制備50mL的校準(zhǔn)溶液10個(gè)裝

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

5) 配套數(shù)據(jù)采集和展示軟件Pyro Workbench:支持多達(dá)10個(gè)Pyro的測(cè)量設(shè)備同時(shí)運(yùn)行。軟件提供設(shè)備的設(shè)置和傳感器的校準(zhǔn)。傳感器讀數(shù)能以數(shù)字和圖表的形式展示,并能以相應(yīng)數(shù)據(jù)文件存儲(chǔ),便于進(jìn)一步的數(shù)據(jù)分析。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

6) 配套分析軟件Pyro Data Inspector:提供耗氧率計(jì)算和漂移補(bǔ)償?shù)葦?shù)據(jù)分析的功能。

7) 傳感器:類型多樣,包括探頭傳感器、探針傳感器、插入式傳感器、裸光纖傳感器、耐溶劑傳感器、薄膜貼、流通管、呼吸瓶等。

應(yīng)用案例

1. 德國(guó)亞琛工業(yè)大學(xué)使用FSO2測(cè)量?jī)x、伸縮探針式氧氣傳感器和呼吸瓶式傳感器分別對(duì)擬南芥冠癭組織(致瘤農(nóng)桿菌侵染引起)的耗氧率及組織內(nèi)部氧氣變化進(jìn)行原位監(jiān)測(cè)和離體測(cè)量(右圖)。論文發(fā)表于2019年《Frontiers in Plant Science》雜志。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

2. Mignolli等人研究發(fā)現(xiàn)部分水淹會(huì)顯著抑制番茄根系的呼吸和生長(zhǎng),卻會(huì)增加下胚軸的氧氣消耗。

研究小組使用FSO2氧氣測(cè)量?jī)x、伸縮式探針傳感器和呼吸瓶進(jìn)行了耗氧率的測(cè)量。論文發(fā)表于2021年《Plant, Cell & Environment》雜志。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

3. 英國(guó)海洋生物協(xié)會(huì)和美國(guó)北卡萊羅納大學(xué)威明頓分校聯(lián)合研究破壞鈣化作用對(duì)顆石藻生長(zhǎng)的影響,分別使用了AquaPen藻類葉綠素?zé)晒鈨x和FSO2呼吸瓶分別測(cè)量了其最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)和凈光合速率。論文發(fā)表于2018年《New Phytologist》雜志。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

4. Ouada等人研究發(fā)現(xiàn)高耐受性和高移除率使嗜堿性綠藻Picocystis在有機(jī)污染物雙酚ABPA)的水質(zhì)凈化方面具有巨大的潛力。研究小組使用AquaPen藻類葉綠素?zé)晒鈨x和FSO2呼吸瓶分別測(cè)量了暴露于不同濃度雙酚APicocystis凈光合速率和PSII最大光化學(xué)效率在5天中的變化。論文發(fā)表于2018年《Ecotoxicology and Environmental Safety》雜志。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

5. 芬蘭土爾庫(kù)大學(xué)使用FSO2單通道測(cè)量?jī)x和裸光纖式氧氣傳感器測(cè)量南瓜葉綠體類囊體的光合放氧。

RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x(植物領(lǐng)域)

 

近年部分參考文獻(xiàn)

Tanaka, K., Kishi, M., Assaye, H. & Toda, T. Low temperatures in dark period affect biomass productivity of a cyanobacterium Arthrospira platensis. Algal Research 52, 102132 (2020).

Sheehan, C. E., Nielsen, D. A. & Petrou, K. Macromolecular composition, productivity and dimethylsulfoniopropionate in Antarctic pelagic and sympagic microalgal communities. Marine Ecology Progress Series 640, 45–61 (2020).

Karemore, A., Yuan, Y., Porubsky, W. & Chance, R. Biomass and pigment production for Arthrospira platensis via semi-continuous cultiv ation in photobioreactors: Temperature effects. Biotechnology and Bioengineering 117, 3081–3093 (2020).

Galès, A. et al. Control of the pH for marine microalgae polycultures: A key point for CO2 fixation improvement in intensive cultures. Journal of CO2 Utilization 38, 187–193 (2020).

Kazbar, A. et al. Effect of dissolved oxygen concentration on microalgal culture in photobioreactors. Algal Research 39, 101432 (2019).

Heydarizadeh, P. et al. Carbon Orientation in the Diatom Phaeodactylum tricornutum: The Effects of Carbon Limitation and Photon Flux Density. Front. Plant Sci. 10, (2019).

Harvey, B. P., Agostini, S., Kon, K., Wada, S. & Hall-Spencer, J. M. Diatoms Dominate and Alter Marine Food-Webs When CO2 Rises. Diversity 11, 242 (2019).

Chu, Y., Liu, Y., Li, J. & Gong, Q. Effects of elevated pCO2 and nutrient enrichment on the growth, photosynthesis, and biochemical compositions of the brown alga Saccharina japonica (Laminariaceae, Phaeophyta). PeerJ 7, e8040 (2019).

Walker, C. E. et al. The requirement for calcification differs between ecologically important coccolithophore species. New Phytologist 220, 147–162 (2018).

Ben Ouada, S., Ben Ali, R., Leboulanger, C., Ben Ouada, H. & Sayadi, S. Effect of Bisphenol A on the extremophilic microalgal strain Picocystis sp. (Chlorophyta) and its high BPA removal ability. Ecotoxicology and Environmental Safety 158, 1–8 (2018).


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